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小鵝瘟（GPV）核酸檢測(cè)試劑盒（熒光-PCR法）

                                                      2025-01版

【產(chǎn)品名稱】

通用名稱：小鵝瘟（GPV）核酸檢測(cè)試劑盒（熒光-PCR法）

【包裝規(guī)格】50T/盒

【預(yù)期用途】

小鵝瘟是由鵝細(xì)小病毒引起的雛鵝急性敗血性傳染病。病雛鵝的臨診特點(diǎn)是精神委頓，食欲廢絕，嚴(yán)重下痢，有時(shí)出現(xiàn)神經(jīng)癥狀，死亡率高，對(duì)養(yǎng)鵝業(yè)的發(fā)展，影響極大。本試劑盒適用于檢測(cè)鵝類動(dòng)物的內(nèi)臟器官、血液、分泌物和排泄物等樣本中的鵝細(xì)小病毒，用于鵝細(xì)小病毒感染的輔助診斷，其檢測(cè)結(jié)果僅供參考。

【檢驗(yàn)原理】

本試劑盒采用TaqMan探針?lè)▽?shí)時(shí)熒光PCR技術(shù)，設(shè)計(jì)1對(duì)鵝細(xì)小病毒特異性引物，結(jié)合1條特異性探針，用熒光PCR技術(shù)對(duì)鵝細(xì)小病毒的核酸進(jìn)行體外擴(kuò)增檢測(cè)，用于臨床上對(duì)可疑感染者的病原學(xué)診斷。

【試劑組成】

說(shuō)明：不同批號(hào)的試劑盒組分不可交互使用。

【儲(chǔ)存條件及有效期】

-20℃±5℃，避光保存、運(yùn)輸、反復(fù)凍融不超過(guò)5次，有效期12個(gè)月。

【適用儀器】

ABI 、安捷倫MX3000P/3005P、LightCycler、Bio-Rad、eppendorf等系列熒光定量PCR檢測(cè)儀。

【標(biāo)本采集】

     病死或撲殺鵝取內(nèi)臟器官；活禽取呼吸道拭子或泄殖腔拭子，放于1mL 50%甘油生理鹽水中。全血樣本，抽取1ml血液進(jìn)行測(cè)試。

【保存和運(yùn)輸】

上述標(biāo)本短期內(nèi)可保存于-20℃，長(zhǎng)期保存可置-70℃，但不能超過(guò)6個(gè)月，標(biāo)本運(yùn)送應(yīng)采用2~8℃冰袋運(yùn)輸，嚴(yán)禁反復(fù)凍融。

【使用方法】

1. 樣品處理（樣本處理區(qū)）

1.1 樣本前處理

組織樣品：每份組織分別從3個(gè)不同的位置稱取樣品約1g，手術(shù)剪剪碎混勻后取0.5g于研磨器中研磨，加入1.5mL生理鹽水后繼續(xù)研磨，待勻漿后轉(zhuǎn)至1.5mL滅菌離心管中，8000rpm離心2min，取上清液100μL于1.5mL滅菌離心管中；泄殖腔拭子直接取100μL提取。全血樣本：待血凝固后，取血清100μL于1.5mL滅菌離心管中。

1.2 DNA提取

為了使實(shí)驗(yàn)結(jié)果穩(wěn)定、有效、可靠，建議使用商品化的DNA提取試劑盒進(jìn)行提取，嚴(yán)格按照對(duì)應(yīng)試劑盒說(shuō)明書進(jìn)行操作。

2. 試劑配制（試劑準(zhǔn)備區(qū)）

根據(jù)待檢測(cè)樣本總數(shù)，設(shè)所需要的PCR反應(yīng)管管數(shù)為N(N=樣本數(shù)+1管陰性對(duì)照+1管陽(yáng)性對(duì)照；樣品每滿7份，多配制1份)，每測(cè)試反應(yīng)體系配制如下表：

3. 加樣（樣本處理區(qū)）

將步驟1提取的DNA、陽(yáng)性質(zhì)控品、陰性質(zhì)控品各取5μL，分別加入相應(yīng)的反應(yīng)管中，蓋好管蓋，混勻，短暫離心。

4. PCR擴(kuò)增（核酸擴(kuò)增區(qū)）

4.1 將待檢測(cè)反應(yīng)管置于熒光定量PCR儀反應(yīng)槽內(nèi)；

4.2 設(shè)置好通道、樣品信息，反應(yīng)體系設(shè)置為25μL；

熒光通道選擇： 檢測(cè)通道（Reporter Dye）FAM檢測(cè)鵝細(xì)小病毒，淬滅通道（Quencher Dye）NONE，請(qǐng)勿選擇ROX參比熒光。

4.3 推薦循環(huán)參數(shù)設(shè)置：

5. 結(jié)果分析判定

5.1 結(jié)果分析條件設(shè)定

設(shè)置Baseline和Threshold：一般直接按機(jī)器自動(dòng)分析的結(jié)果分析，當(dāng)曲線出現(xiàn)整體傾斜時(shí)，根據(jù)分析后圖像調(diào)節(jié)Baseline的start值(一般可在3~15范圍內(nèi)調(diào)節(jié))、stop值(一般可在5~20范圍內(nèi)調(diào)節(jié))，以及Threshold的Value值(上下拖動(dòng)閾值線至高于陰性對(duì)照)，重新分析結(jié)果。

5.2 結(jié)果判斷

陽(yáng)性：檢測(cè)通道Ct值≤35.0，且曲線有明顯的指數(shù)增長(zhǎng)曲線。

可疑：檢測(cè)通道35.0<Ct值<38.0，且出現(xiàn)典型擴(kuò)增曲線的樣本建議重復(fù)試驗(yàn)，重復(fù)試驗(yàn)結(jié)果出現(xiàn)Ct值<38.0且有典型擴(kuò)增曲線者為陽(yáng)性，否則為陰性。

陰性：樣本檢測(cè)結(jié)果無(wú)Ct值且無(wú)明顯的擴(kuò)增曲線。

6. 檢測(cè)方法的局限性

? 樣本檢測(cè)結(jié)果與樣本收集、處理、運(yùn)送以及保存質(zhì)量有關(guān)；

? 樣本提取過(guò)程中沒(méi)有控制好交叉污染，會(huì)出現(xiàn)假陽(yáng)性結(jié)果；

? 陽(yáng)性對(duì)照、擴(kuò)增產(chǎn)物泄漏，會(huì)導(dǎo)致假陽(yáng)性結(jié)果；

? 病原體在流行過(guò)程中基因突變、重組，會(huì)導(dǎo)致假陰性結(jié)果；

? 不同的提取方法存在提取效率差異，會(huì)導(dǎo)致假陰性結(jié)果；

? 試劑運(yùn)輸，保存不當(dāng)或試劑配制不準(zhǔn)確引起的試劑檢測(cè)效能下降，出現(xiàn)假陰性或定量檢測(cè)不準(zhǔn)確的結(jié)果；

? 本檢測(cè)結(jié)果僅供參考，如須確診請(qǐng)結(jié)合臨床癥狀以及其他檢測(cè)手段。

7. 質(zhì)控標(biāo)準(zhǔn)

陰性質(zhì)控品：無(wú)明顯擴(kuò)增曲線且無(wú)Ct值顯示；

陽(yáng)性質(zhì)控品：擴(kuò)增曲線有明顯指數(shù)生長(zhǎng)期，且Ct值≤30；

以上條件應(yīng)同時(shí)滿足，否則實(shí)驗(yàn)視為無(wú)效。

8. 性能指標(biāo)

（1）敏感性：內(nèi)控樣本敏感性為100%，綜合評(píng)價(jià)敏感性98%以上。最低檢測(cè)限不低于1000copies/ml。

（2）特異性：100%。

（3）穩(wěn)定性：批內(nèi)及批間差異≤3%。

【注意事項(xiàng)】

? 所有操作嚴(yán)格按照說(shuō)明書進(jìn)行；

? 試劑盒內(nèi)各種組分使用前應(yīng)自然融化，完全混勻并短暫離心；

? 反應(yīng)液應(yīng)避光保存；

? 反應(yīng)中盡量避免氣泡存在，管蓋需蓋緊；

? 使用一次性吸頭、一次性手套和各區(qū)專用工作服；

? 樣本處理、試劑配制、加樣需在不同區(qū)進(jìn)行，以免交叉污染；

? 實(shí)驗(yàn)完畢后用10%次氯酸或75%酒精或紫外燈處理工作臺(tái)和移液器；

? 試劑盒里所有物品應(yīng)視為污染物對(duì)待，并按照《微生物生物醫(yī)學(xué)實(shí)驗(yàn)室生物安全通則》進(jìn)行處理。

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